在之前的《超详细Nanodrop结果判读!(上)》中,我们探讨了A260/A280与A260/A230比值的正常区间,该区间内的比值通常被视作纯核酸的标志。
随后的《超详细Nanodrop结果判读!(中)》一文,则详细剖析了DNA/RNA提取纯化过程中常见的污染物,如蛋白质、胍盐、苯酚等,以及这些污染物如何影响A260/A280与A260/A230的比值。
这些污染物在特定波长(如280nm或230nm)处的吸光性,会导致比值降低。然而,实验过程中有时会遇到比值偏高的情况,这是何故呢?接下来,让我们继续深入探究。
1. DNA中的RNA残留
在提取基因组DNA(例如从细菌中提取)时,通常会加入RNase并在37℃下孵育10分钟来去除RNA。但由于细胞特性的差异,RNA可能仍会有残留。
为了探究RNA对DNA浓度及两个比值的影响,Giron Koetsier等进行了实验研究,他们在100ng/μl的DNA中混入了不同比例的RNA,并对Nanodrop的检测结果进行了分析。
研究结果显示:
a. RNA的残留会导致DNA浓度检测值偏高;
b. 随着RNA比例的增加,A260/A280的比值也会上升。当RNA占比超过20%时,A260/A280的比值会超过1.9。但值得注意的是,即使RNA残留比例高达50%,A260/A280的比值也仅为1.99,仍处于可接受范围内。因此,单纯依靠A260/A280的比值来判断RNA残留并不十分准确。
若检测到RNA残留,可通过延长RNase在37℃下的孵育时间,并再次进行纯化后测定来解决。
此外,还有RNA降解、EDTA影响以及Nanodrop的blank操作等因素也可能导致A260/A280与A260/A230比值偏高,实验人员需仔细分析、逐一排查。
综上所述,A260/A280与A260/A230的比值确实是评估核酸质量的重要指标。当遇到比值异常时,可依据本文所探讨的原因进行问题定位与改进。愿各位的实验都能顺利进行!
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